지난 20년 동안 바이오 이미징은 펨토초, 초고속 레이저 기술이 널리 사용되면서 혜택을 보았습니다. 펨토초(10 -15 s)와 피코초(10 -12 s) 펄스는 바이오 샘플에 고유한 물리적 프로세스를 유도하여 기존의 공초점 이미징을 통해서는 볼 수 없는 귀중한 자료를 얻을 수 있게 합니다. 기존의 공초점 이미징이 아닌 다광자 이미징을 선택하는 주된 이유는 뇌 조직과 같은 불투명한 샘플을 더 깊이 영상화할 수 있기 때문입니다. 이것이 어떻게 가능하며, 성공적인 다광자 이미징 실험에 필요한 조건은 무엇일까요?

다광자 이미징은 다양한 형광 염료에서 두 개 이상의 광자를 동시에 흡수하여 얻게 됩니다. 지난 10년 동안, 여러 가지 형광 염료가 등장하며 다광자 이미징 스펙트럼 범위를 (680-1300 nm) 확장시켰습니다. 그림 1 에서 요약된 염료들을 한눈에 확인할 수 있습니다. 염료는 특정 생물학적 과정과 구조를 조사하기 위한 형광 마커로 사용됩니다. 다광자 흡수 과정은 광자의 밀도가 가장 높은 영역과 직접적으로 관련이 있어, 그 결과 발생하는 형광이 초점면에 국한되게 됩니다. 초점면 이외의 형광 신호를 차단하기 위해 기계적 조리개가 필요하지 않으므로 산란과광 손상이 적습니다. 또한, 다광자 이미징은 근적외선 여기 파장을 사용하기 때문에 샘플 내에서 1 mm 이상의 3차원 입체 영상을 생성할 수 있습니다.

다광자 이미징의 진화

1990년대 초부터 타이타늄:사파이어 (Ti:sapphire) 레이저는 다광자 이미징에 선호되는  광원이었습니다. 고체레이저 아키텍쳐는 근적외선 스펙트럼 영역(700 – 1000 nm)에서 견고하며 신뢰성 있는 동작을 제공합니다. 다광자 이미징에 적용했을 때 작업 흡수 영역은 2광자 프로세스의 경우 (~350-500 nm), 3광자 프로세스의 경우 (~233-333 nm)로 변환되며, 이는 생물학적으로 관련이 있는 다양한 형광단에 이상적인 범위입니다.

가장 인기 있는 형광 단백질은 900 nm 이상 파장의 2광자 영역에서 최적으로 여기 됩니다: eGFB (930 nm), eYFP (960 nm) 및 적색 이동 단백질은 mCherry, tdTomato, DSRed, E2-Crimson 과 같이 1000-1100 nm에서 가장 잘 여기 됩니다.

다광자 이미징을 위한 최근 세대의 레이저는 이테르븀(Yb)을 기반으로 합니다. 이 광원들은 비선형 주파수 변환을 사용하여 680 – 1300nm의 범위에서 작동합니다. 이러한 새로운 레이저들은 출력 조절 외에도 고정된 파장의 고출력을 제공하여 second-harmonic generation (SHG), third-harmonic generation (THG), coherent anti-Stokes Raman scattering (CARS) and stimulated Raman scattering (SRS). 과 같은 라벨-프리 기술을 가능하게 합니다. 라벨-프리 방식은 생물학적 샘플에 자연적으로 존재하는 내생적 구조를 드러낼 수 있으며, 함께 사용할 경우, 기존의 다광자 이미징과 결합하면 더 자세한 이미지를 제공합니다. 아래 그림 1을 참조하십시오.

Mouse mammary gland, label free image of collagen (SHG, magenta) and adipocytes (THG, yellow)
그림 1. 다광자 이미징 성능 곡선

멀티모달 이미징

이중 출력 빔을 결합하여 동시 여기를 가능하게 함으로서, 끊임없이 변화하는 멀티모달 이미징의 요구 사항을 충족할 새로운 플랫폼이 준비되었습니다. 파리에 위치한 Curie/CNRS 연구소의 Marie Irondelle 박사는 젖샘 내 종양 발생 원인을 연구합니다 (그림 2 참조). 이전 실험에서는 생쥐의 젖샘을 형광 염료를 사용하지 않고 이미지화했습니다. Irondelle 박사는 SHG 이미징(마젠타색)으로 콜라겐을 THG 이미징(노란색)으로 지방세포를 동시에 관찰했습니다.

멀티모달 이미징 방식은 생체 내 실험을 수행하는 데 아주 유용할 수 있습니다. 시드니에 있는 100주년 암 의학 및 세포 생물학 연구소의 Michael Kuligowski 박사는 피부에서 T 세포와 수지상세포 사이의 상호 작용을 연구하고 있습니다 (그림 3 참조). 실험에서, CMTPX로 표시된 T 세포를 실험용 생쥐에서 채취하여 GFP로 표시된 수지상세포가 있는 다른 생쥐에 주입했습니다. GFP 라벨이 붙은 수지상세포는 925 nm 에서 튜닝한 Mai Tai® DeepSee™ Ti:sapphire 레이저로 이미징하였고, CMTPX 라벨의 T세포는 1080 nm 에서 튜닝한 InSight® DS+ 로 이미징하였습니다. 실험은 약 40분 동안 수지상세포와 상호작용하는 T 세포만을 관찰합니다.

Mouse mammary gland, label free image of collagen (SHG, magenta) and adipocytes (THG, yellow)
그림 2. InSight DS+™로 이미징 한 생쥐의 젖샘 사진. 콜라겐(SHG, 마젠타색), 지방세포(THG, 노란색)

또 다른 실험은 다광자 이미징을 사용하여 전체적인 제브라피시 배아의 초기 발달을 관찰합니다. 아래 그림 4 와 같이 프랑스 Gif-sur-Yvette 에 있는 프랑스 국립 과학 연구 센터의 Nadine Peyrieas 박사는 InSight DS+ Dual을 사용하여 8시간 동안 배아를 관찰했습니다. 레이저의 이중 빔 구성을 사용하여 980 nm 와 1041 nm 에서 동시에 다광자 이미징이 가능했습니다. 배아 세포막은 eGFP로, 세포 핵은 mCherry 로 표시되었습니다.

Two-color simultaneous imaging allows for the continuous tracking of T cells and dendritic cells as they interact with mouse skin over several hours
그림 3. 두 가지색 동시 이미징으로 T 세포와 수지상세포가 생쥐의 피부와 몇 시간에 걸쳐 상호 작용하는 것을 추적할 수 있습니다. Michael Kuligowski 박사, 100주년 암 의학 및 세포 생물학 연구소 제공.

전체적인 제브라피쉬 배아의 초기 발달은 감소된 전력 수준에서 MPEF 현미경을 사용하여 연속적으로 영상화할 수 있습니다. 이 실험에서, Nadine Peyrieas 박사는 InSight DS+ Dual 이 장착된 현미경을 사용하여 8시간 동안 배아의 발달을 관찰했습니다(그림 4 참조). 배아 세포막은 eGFP로, 세포 핵은 mCherry로 표시되었습니다. 레이저의 이중 빔 구성을 사용하여 eGFP 와 mCherry 를 각각 980 nm 와 1041 nm 에서 동시에 이미지화했습니다. 배아는 앞면과 뒷면 모두에서 순차적으로 이미지화되었습니다.

Simultaneous tracking of cell membranes tagged with eGFP and cell nuclie tagged with mCherry reveals the development with impressive details.
그림 4. 다광자 이미징은 살아있는 제브라피쉬 발달의 장기 모니터링과 호환됩니다. eGFP로 표시된 세포막과 mCherry로 표시된 세포 핵의 동시 관찰은 인상적인 디테일과 함께 제브라피쉬의 발달을 보여줍니다. (a) 0, (b) 4, (c) 6, (d) 8 시간에서의 배아 발달. Nadine Peyrieas박사, 프랑스 국립 과학 연구 센터, LaVision Biotec 제공.

다광자 이미징 기술

Energy level diagrams for popular multiphoton imaging techniques
그림 5. 널리 사용되는 다광자 이미징 기술의 에너지 준위 다이어그램